Comment restaurer la santé intestinale de votre chien après l’administration d’antibiotiques : Un guide fondé sur des données probantes

Résumé

Les antibiotiques sauvent des vies. Lorsque votre chien souffre d’une infection bactérienne grave, ils constituent un outil essentiel dans l’arsenal de votre vétérinaire. Mais chaque traitement antibiotique a un coût caché dont la plupart des propriétaires de chiens n’ont jamais entendu parler : des dommages importants, parfois durables, aux billions de micro-organismes bénéfiques qui vivent dans l’intestin de votre chien.

Le microbiome intestinal canin n’est pas simplement un ensemble de bactéries qui aident à digérer les aliments. Des recherches menées par le laboratoire gastro-intestinal de l’université A&M du Texas, sous la direction du professeur Jan Suchodolski, l’une des plus grandes autorités mondiales en matière de microbiome canin, ont établi que cette communauté microbienne fonctionne comme ce que nous appelons chez Bonza un centre de commandement de la santé – régulant la fonction immunitaire, produisant des métabolites essentiels, convertissant les acides biliaires, protégeant contre les agents pathogènes et influençant les systèmes organiques, du cerveau à la peau, par le biais d’un réseau d’axes entre l’intestin et l’organe. 1,2

Lorsque les antibiotiques perturbent ce centre de commandement, les conséquences peuvent aller bien au-delà d’un épisode de selles molles. Comprendre ce qui se passe dans l’intestin de votre chien pendant et après une antibiothérapie, et savoir comment favoriser le rétablissement grâce à une alimentation ciblée, peut faire une différence significative pour le confort à court terme et la santé à long terme de votre chien.

Cet article rassemble les dernières recherches évaluées par des pairs pour expliquer les effets des antibiotiques sur le microbiome canin, les antibiotiques couramment prescrits qui causent le plus de perturbations, le temps nécessaire à la guérison et les stratégies nutritionnelles fondées sur des données probantes qui peuvent aider à rétablir la santé microbienne.

Principaux enseignements

Tout traitement antibiotique par voie orale justifie un soutien intestinal, qu’il ait été prescrit pour une affection intestinale, une infection cutanée, une infection urinaire ou un autre problème.

Les antibiotiques endommagent le microbiome intestinal en même temps que l’infection qu’ils traitent. Les recherches montrent qu’ils réduisent la diversité microbienne, épuisent les bactéries essentielles comme C. hiranonis et Faecalibacterium, entravent la conversion des acides biliaires et favorisent la prolifération des pathogènes.

Certains antibiotiques sont plus agressifs pour l’intestin que d’autres. Le métronidazole et la tylosine (antibiotiques à spectre anaérobie) provoquent la dysbiose la plus grave et la plus prolongée. L’amoxicilline-acide clavulanique a un impact plus limité sur le microbiome mais favorise les bactéries résistantes aux antibiotiques.

La guérison n’est pas garantie et varie considérablement d’un chien à l’autre. Les effets sur le microbiome persistent pendant au moins quatre semaines après le métronidazole et jusqu’à deux mois ou plus après la tylosine. Certains chiens peuvent ne jamais retrouver complètement leur profil microbien d’avant l’antibiotique.

Commencez à apporter un soutien nutritionnel à l’intestin dès le premier jour – n’attendez pas la fin du cours. Les postbiotiques inactivés par la chaleur (comme le HA-122) ne sont pas affectés par les antibiotiques et peuvent être administrés immédiatement en même temps qu’eux. Les prébiotiques et les nutriments de la barrière intestinale tels que la L-glutamine favorisent également le rétablissement dès le début.

Une approche multicible est plus efficace que les probiotiques seuls. La recherche soutient la combinaison de prébiotiques (inuline de racine de chicorée) pour nourrir les bactéries bénéfiques survivantes, de postbiotiques (comme L helveticus HA-122) pour réduire la prolifération pathogène, de probiotiques sporulés (comme Calsporin®) pour la résilience microbienne, de nutriments pour la barrière intestinale (L-glutamine, zinc) pour la réparation de l’épithélium, et de plantes anti-inflammatoires pour gérer l’inflammation causée par la dysbiose.

La perturbation de l’intestin affecte la santé de l’ensemble du corps, et pas seulement la digestion. Le microbiome intestinal communique avec le système immunitaire, le cerveau, la peau et les voies métaboliques par l’intermédiaire des axes intestin-organe, ce qui signifie que la dysbiose induite par les antibiotiques peut se manifester par une suppression immunitaire, des changements cutanés, des modifications du comportement et des perturbations métaboliques.

Continuez à soutenir l’intestin de votre chien pendant au moins quatre semaines après la dernière dose d’antibiotique – plus longtemps si votre chien a reçu plusieurs traitements ou s’il présente des changements digestifs continus.

Comprendre le microbiome intestinal de votre chien

Avant de comprendre les dommages causés par les antibiotiques, nous devons savoir à quoi ressemble un microbiome canin sain et ce qu’il fait.

L’intestin d’un chien adulte en bonne santé abrite une communauté microbienne remarquablement diversifiée, dont les cinq embranchements bactériens les plus abondants sont les Firmicutes, les Fusobacteria, les Bacteroidetes, les Proteobacteria et les Actinobacteria. 2,3 Au sein de ces grands groupes, des espèces bactériennes spécifiques remplissent des fonctions essentielles qui influencent directement la santé de votre chien :

Clostridium(Peptacetobacter) hiranonis – Le convertisseur d’acides biliaires

Cette bactérie est peut-être le marqueur microbien le plus important pour la santé intestinale des chiens. Peptacetobacter hiranonis(C. hiranonis) convertit les acides biliaires primaires (produits par le foie) en acides biliaires secondaires, un processus essentiel pour une bonne digestion des graisses, le contrôle des agents pathogènes et la signalisation métabolique. Les recherches du professeur Suchodolski ont montré qu’une diminution de l’abondance de C. hiranonis est l’un des marqueurs de dysbiose les plus cohérents et les plus significatifs sur le plan clinique chez les chiens. 1,4,5

Faecalibacterium prausnitzii – Le cheval de bataille des anti-inflammatoires

Il s’agit d’un producteur clé de butyrate, un acide gras à chaîne courte (AGCC) qui alimente les cellules tapissant le côlon, soutient l’intégrité de la barrière intestinale et exerce de puissants effets anti-inflammatoires. Cette bactérie est fréquemment décimée chez les chiens souffrant d’entéropathies chroniques et lors d’une antibiothérapie. 2,6

Producteurs d’acides gras à chaîne courte

Les bactéries des genres Blautia, Fusobacterium et Turicibacter produisent des AGCS (butyrate, propionate et acétate) qui nourrissent les colonocytes, régulent les réponses immunitaires, maintiennent la barrière de mucus intestinale et aident à prévenir la colonisation par des bactéries nocives. Ils font systématiquement partie des taxons les plus affectés par les traitements antibiotiques.1,2,5

L’indice de dysbiose

Le laboratoire de M. Suchodolski a mis au point l’indice de dysbiose (DI), un outil clinique validé basé sur la PCR qui mesure l’abondance de sept taxons bactériens clés dans les échantillons de matières fécales canines et résume les résultats sous la forme d’un score numérique unique. Un DI supérieur à 2 indique une dysbiose importante ; les valeurs comprises entre 0 et 2 indiquent des modifications légères à modérées du microbiome. Cet outil a transformé la manière dont les chercheurs et les cliniciens vétérinaires quantifient la santé intestinale, et il figure en bonne place dans les études sur la perturbation des antibiotiques que nous évoquerons plus loin. 1,4

Les effets des antibiotiques sur le microbiome intestinal canin

Le problème fondamental des antibiotiques est qu’ils ne peuvent pas faire la distinction entre les bactéries responsables d’une infection et les bactéries bénéfiques présentes dans l’intestin. Une étude exhaustive réalisée en 2023 par Stavroulaki, Suchodolski et Xenoulis, publiée dans The Veterinary Journal, a synthétisé les données relatives à plusieurs classes d’antibiotiques chez les chiens et les chats. Leurs conclusions confirment que la dysbiose induite par les antimicrobiens implique une diminution de la richesse et de la diversité microbiennes, la perte de groupes de bactéries bénéfiques, la prolifération d’agents pathogènes intestinaux et des altérations des fonctions métaboliques et des produits finaux du microbiote. 7

Les antibiotiques à spectre d’activité anaérobie – dont le métronidazole et la tylosine, deux des antibiotiques les plus couramment prescrits pour les affections gastro-intestinales canines – ont tendance à provoquer la dysbiose la plus grave et la plus prolongée, précisément parce que la grande majorité (environ 95 %) des bactéries intestinales sont anaérobies. 7,8

Le métronidazole : Le plus étudié – et le plus nocif

Le métronidazole est l’un des antibiotiques les plus prescrits pour les problèmes gastro-intestinaux des chiens, en particulier lorsqu’une infection par Giardia ou Clostridium perfringens est suspectée. C’est également l’un des antibiotiques les plus étudiés pour ses effets sur le microbiome.

Dans une étude historique réalisée en 2020, Pilla et al. ont étudié les effets de 14 jours de métronidazole chez 24 chiens en bonne santé. Les résultats ont été frappants : le métronidazole a considérablement réduit la richesse microbienne, des bactéries clés telles que les Fusobacteria ne se rétablissant pas complètement, même quatre semaines après l’arrêt de l’antibiotique. L’indice de dysbiose était significativement élevé pendant le traitement. Ces modifications du microbiome se sont accompagnées d’une augmentation du lactate fécal (marqueur d’une fermentation perturbée), d’une augmentation des marqueurs du stress oxydatif dans les fèces et dans le sérum, et surtout d’une altération de la conversion des acides biliaires – sept des seize chiens traités présentant toujours une production déprimée d’acides biliaires secondaires et une abondance réduite de C. hiranonis quatre semaines après l’arrêt du traitement. Plus de la moitié (56 %) des chiens ont souffert de diarrhée pendant l’administration du médicament. 5

Principale conclusion : Les chercheurs ont conclu qu’il y avait un « effet minimum de 4 semaines du métronidazole sur le microbiome fécal et le métabolome, ce qui plaide en faveur d’une approche prudente de la prescription de métronidazole chez les chiens ». 5

Une étude pilote menée en 2020 par Chaitman et al. comparant la transplantation de microbiote fécal (FMT) au métronidazole chez des chiens souffrant de diarrhée aiguë a renforcé ces inquiétudes. Bien que les deux traitements aient amélioré la consistance des selles en l’espace d’une semaine, au 28e jour, le groupe traité au métronidazole présentait toujours des scores d’indice de dysbiose significativement élevés et une diversité microbienne altérée par rapport aux témoins sains, alors que le groupe traité par FMT avait retrouvé des profils proches de la normale. 9

Tylosin : Variation individuelle de longue durée

La tylosine, un antibiotique macrolide couramment prescrit pour les chiens atteints de diarrhée chronique ou répondant à la tylosine, entraîne également une perturbation importante du microbiome. Manchester et al. (2019) ont mené un essai prospectif contrôlé randomisé sur 16 chiens en bonne santé, en leur administrant de la tylosine pendant seulement sept jours. Au 7e jour, les chiens traités présentaient une diversité bactérienne significativement réduite, avec des pertes particulières dans les familles anaérobies telles que les Fusobacteriaceae et les Veillonellaceae. Les concentrations d’acides biliaires primaires sont restées élevées au 21e et au 63e jour. 10

La découverte la plus frappante a été la nature hautement individuelle de la récupération. Deux mois après l’arrêt de la tylosine, certains chiens avaient généralement retrouvé leur profil microbien d’avant le traitement, tandis que d’autres présentaient des communautés nettement modifiées avec des augmentations proportionnelles d’entérobactéries potentiellement pathogènes. Sur les cinq chiens dont le DI était normal au départ et pour lesquels on disposait d’échantillons au jour 63, seuls deux avaient retrouvé un DI normal à ce moment-là. Les chercheurs ont conclu que « deux mois après une exposition orale à la tylosine, le rétablissement du microbiote indigène est possible mais non garanti ». 10

L’acide amoxicilline-clavulanique : Impact limité sur le microbiome, mais problèmes de résistance

L’amoxicilline-acide clavulanique (commercialisé sous le nom de Clavamox®/Synulox®) est l’un des antibiotiques les plus fréquemment prescrits en pratique vétérinaire, y compris pour les affections gastro-intestinales. Werner et al. (2020) ont mené une étude prospective, contrôlée par placebo et en double aveugle sur 16 chiens souffrant de diarrhée aiguë. L’étude n’a pas révélé de différence significative dans l’indice de dysbiose entre le groupe antibiotique et le groupe placebo, ce qui suggère un impact plus limité sur le microbiome global par rapport au métronidazole ou à la tylosine. L’analyse ultérieure du professeur Suchodolski a confirmé que l’amoxicilline-acide clavulanique a un « effet limité sur le DI et C. hiranonis« . 1,11

Cependant, l’étude de Werner a révélé un autre motif d’inquiétude : la proportion d’E. coli résistants à l’amoxicilline a augmenté de façon spectaculaire (jusqu’à une médiane de 100 %) pendant le traitement et est restée significativement élevée (médiane de 10 %) trois semaines après la fin du traitement. L’étude a également montré que 38 % des chiens traités aux antibiotiques étaient positifs au C. difficile au sixième jour (contre aucun au départ), ce qui suggère que même lorsque le profil général du microbiome semble moins perturbé, les antibiotiques peuvent encore favoriser la colonisation par des espèces potentiellement pathogènes. Il est important de noter qu’aucun bénéfice clinique de l’antibiotique n’a été observé pour la diarrhée aiguë. 11

Le schéma général des classes d’antibiotiques

Bien que le métronidazole et la tylosine soient les plus étudiés, le modèle de dysbiose induite par les antibiotiques est cohérent avec les antibiotiques canins couramment prescrits, y compris l’enrofloxacine (une fluoroquinolone) et la doxycycline. La revue de Stavroulaki et al. (2023) a identifié que le spectre d’activité, la durée d’utilisation et le dosage ne permettent pas toujours de prédire l’étendue et la durée de la dysbiose pour un chien donné. La récupération microbienne peut être « extrêmement individualisée » et des traitements répétés du même antibiotique peuvent affecter le microbiome différemment à chaque fois. 7

Au niveau métabolique, la désorganisation antibiotique cible systématiquement les mêmes voies critiques : réduction de la production d’acides gras saturés (en particulier le butyrate), altération de la conversion des acides biliaires de la forme primaire à la forme secondaire, augmentation du lactate fécal et élévation des marqueurs de stress oxydatif. Il ne s’agit pas de mesures abstraites effectuées en laboratoire : elles se traduisent directement par une fonction de barrière intestinale compromise, une régulation immunitaire réduite et une susceptibilité accrue à la colonisation pathogène. 2,5,7

Combien de temps dure la convalescence ?

L’une des questions les plus importantes que se posent les propriétaires de chiens est la suivante : « Combien de temps faut-il pour que l’intestin de mon chien revienne à la normale ? » La réponse honnête et fondée sur des preuves est : cela dépend, et dans certains cas, le microbiome peut ne pas revenir complètement à son état pré-antibiotique.

Sur la base des recherches publiées, voici ce que nous savons des délais de guérison :

Antibiotique	Récupération typique	Principaux éléments d’information
Métronidazole	4+ semaines ; certains chiens présentent une dysbiose persistante	44 % des chiens présentaient une déplétion persistante en C. hiranonis et un dysmétabolisme des acides biliaires 4 semaines après le traitement (Pilla et al. 2020).
Tylosine	2 semaines à 2 mois et plus ; très individuel	La plupart des paramètres sont revenus à la ligne de base au 14e jour, mais certains chiens étaient encore dysbiotiques à 2 mois. Le rétablissement est « possible mais non garanti » (Manchester et al. 2019).
Amoxicilline-acide clavulanique	2-4 semaines pour le microbiome ; 3+ semaines pour les gènes de résistance	Impact limité sur l’immunodéficience, mais les E. coli résistants à l’amoxicilline ont persisté 3 semaines après le traitement (Werner et al. 2020).
Large spectre (général)	2 à 4 semaines chez la plupart des chiens ; des mois chez certains	Suchodolski (2022) : « se normalise dans les 2 à 4 semaines suivant le traitement chez la plupart des animaux, mais certains peuvent présenter une dysbiose persistante pendant plusieurs mois »

La principale conclusion de ces recherches est que la guérison n’est pas uniforme. Certains chiens se rétablissent rapidement, tandis que d’autres peuvent présenter des déséquilibres microbiens pendant des mois. Parmi les facteurs susceptibles d’influencer la guérison figurent la diversité microbiomique de base de chaque chien, l’antibiotique utilisé et la durée du traitement, l’alimentation pendant et après le traitement, la mise en place de mesures de soutien (prébiotiques, postbiotiques), ainsi que l’âge et l’état de santé général du chien.

Au-delà de l’intestin : Pourquoi la dysbiose induite par les antibiotiques est-elle importante pour la santé de tout le corps ?

L’influence du microbiome va bien au-delà de la digestion. Chez Bonza, notre cadre de message  » Un seul intestin. Un chien entier. « reflète la réalité scientifique selon laquelle le microbiome intestinal communique avec pratiquement tous les systèmes organiques par l’intermédiaire de ce que les chercheurs appellent les axes intestin-organe. Lorsque les antibiotiques perturbent le microbiome, les effets peuvent se répercuter à l’extérieur :

Axe intestinal-immunitaire

On estime que 70 à 80 % des cellules immunitaires résident dans le tissu lymphoïde associé à l’intestin. L’appauvrissement des bactéries productrices de SCFA induit par les antibiotiques réduit les signaux qui entraînent et régulent les réponses immunitaires, ce qui peut accroître la sensibilité aux infections et aux conditions inflammatoires. 2,3

Axe intestin-cerveau

Les bactéries intestinales produisent des précurseurs de neurotransmetteurs, notamment des métabolites du tryptophane. La perturbation du métabolisme microbien du tryptophane a été associée à une altération du comportement et de la fonction neurologique dans des études animales. 2

Axe intestin-peau

Les changements dans la production de métabolites microbiens peuvent influencer les voies inflammatoires qui se manifestent dans la peau. Les propriétaires remarquent parfois des changements cutanés ou des démangeaisons accrues pendant ou après les traitements antibiotiques, ce qui peut refléter en partie le lien entre l’intestin et la peau.

Axe intestinal-métabolique

L’altération de la conversion des acides biliaires observée lors d’un traitement antibiotique affecte directement le métabolisme des graisses et la signalisation métabolique. Le retour des acides biliaires secondaires aux acides biliaires primaires est l’une des conséquences métaboliques les plus constantes de la dysbiose induite par les antibiotiques chez les chiens. 5,10

Ce réseau interconnecté de communication entre l’intestin et les organes est précisément la raison pour laquelle le rétablissement du microbiome après la prise d’antibiotiques ne se limite pas à la résolution des symptômes digestifs – il s’agit de restaurer le réseau de santé de l’ensemble de l’organisme.

Les preuves d’un soutien nutritionnel pendant et après l’administration d’antibiotiques

La recherche met en évidence cinq stratégies nutritionnelles complémentaires pour soutenir le microbiome pendant et après l’antibiothérapie : les prébiotiques pour nourrir les bactéries bénéfiques survivantes et favoriser leur rétablissement, les probiotiques et les postbiotiques pour fournir un soutien microbien direct et des métabolites bioactifs, les nutriments de la barrière intestinale pour réparer la muqueuse intestinale, les plantes anti-inflammatoires pour gérer l’inflammation collatérale et les fibres alimentaires pour servir de substrat de fermentation pour la production d’acides gras trans (AGCS).

Les prébiotiques : Nourrir les survivants

Les prébiotiques sont des composés non digestibles – principalement des fibres et des oligosaccharides – qui favorisent sélectivement la croissance des bactéries intestinales bénéfiques. Pendant et après un traitement antibiotique, lorsque les populations bénéfiques sont épuisées, l’apport d’un substrat prébiotique donne aux bonnes bactéries survivantes un avantage concurrentiel lorsqu’elles tentent de se recoloniser. 2,12

Une étude réalisée en 2025 par Martini et al. dans Frontiers in Veterinary Science a étudié les caractéristiques de fermentation des fibres alimentaires en utilisant des inoculums fécaux provenant de chiens traités au métronidazole. La recherche a confirmé que le traitement antibiotique modifiait de manière significative la capacité de fermentation microbienne, mais que les fibres alimentaires pouvaient toujours servir de substrats pour les bactéries productrices de SCFA restantes, ce qui justifie l’inclusion de prébiotiques pendant la convalescence. 12

L’inuline de racine de chicorée, un prébiotique bien étudié, est l’un des principaux ingrédients fonctionnels de l’aliment complet Superfoods & Ancient Grains de Bonza et est présent à des niveaux significatifs dans Bioactive Bites Belly et Biotics (3,63 % de la composition). En tant que fructo-oligosaccharide, l’inuline favorise sélectivement la croissance des espèces bénéfiques de Bifidobactéries et de Lactobacillus, et soutient la production de SCFA – les voies métaboliques les plus endommagées par les antibiotiques. [Pour en savoir plus sur la science de l’inuline de racine de chicorée, consultez notre article consacré à cet ingrédient].

Postbiotiques : Les résultats de la recherche HA-122

L’une des études les plus directement pertinentes pour la récupération post-antibiotique est celle de Deschamps et al. (2025), publiée dans BMC Microbiology. Cette étude a testé Lactobacillus helveticus HA-122 en tant que postbiotique inactivé par la chaleur dans le modèle CANIM-ARCOL – un système de côlon artificiel sophistiqué qui simule l’environnement intestinal canin – spécifiquement pendant et après un traitement simulé au métronidazole et à l’enrofloxacine (deux antibiotiques couramment prescrits en association chez les chiens). 13

Les résultats ont démontré que la supplémentation en postbiotique HA-122 pendant la période d’administration d’antibiotiques réduisait la prolifération des entérobactéries (une famille de bactéries potentiellement pathogènes qui se développent généralement en cas de dysbiose induite par les antibiotiques) et accélérait le retour du microbiome à sa composition pré-antibiotique après l’arrêt des antibiotiques. Il s’agit précisément du type de soutien ciblé et fondé sur des données probantes qui est important pendant une période où l’écosystème intestinal est le plus vulnérable. 13

Duysburgh et al. (2025), qui ont utilisé le simulateur d’intestin canin SHIME® pour démontrer qu’un mélange prébiotique-postbiotique rétablissait l’équilibre microbien et la production d’acides gras saturés dans un modèle de chiens ayant des selles molles, ont apporté des preuves à l’appui de leur thèse. 14 Rawling et al. (2023) ont montré que le HA-122 régulait les protéines de la jonction serrée essentielles à l’intégrité de la barrière intestinale – la barrière même que les antibiotiques peuvent compromettre. 15

L. helveticus HA-122 est le postbiotique actif de Bonza’s Biotics Bioactive Bites, notre supplément ciblé pour la santé intestinale. Il est également présent dans Belly Bioactive B ites (soutien à la digestion) et Boost Bioactive Bites (vitalité). En tant que postbiotique inactivé par la chaleur, HA-122 n’est pas un organisme vivant, ce qui signifie qu’il n’est pas affecté par la co-administration d’antibiotiques et qu’il peut être administré en même temps que l’antibiothérapie dès le premier jour. [Découvrez l’ensemble des données probantes sur le HA-122 dans notre article consacré à l’ingrédient].

Les probiotiques : Soutenir l’écosystème vivant

Bien que les probiotiques vivants soient confrontés au défi évident d’être potentiellement tués par des antibiotiques concomitants, des preuves soutiennent leur utilisation – en particulier les souches probiotiques sporulées qui survivent aux défis gastriques et antibiotiques. Ziese et al. (2018) ont démontré dans un essai contrôlé par placebo que le traitement probiotique(Visbiome®) chez les chiens atteints de diarrhée hémorragique aiguë était associé à une normalisation accélérée du microbiome intestinal, avec une abondance significativement plus élevée de Blautia et Faecalibacterium bénéfiques au 7e jour. 16

Les nouveaux aliments protéinés pour chiens Superfoods & Ancient Grains de Bonza contiennent Calsporin®(Bacillus velezensis DSM 15544), un probiotique sporulé spécialement choisi pour sa résistance. Contrairement aux bactéries végétatives fragiles, les spores de Bacillus survivent à l’acide gastrique, à la bile et à la chaleur – et surtout, leur forme sporulée peut offrir un certain degré de protection contre certains mécanismes antibiotiques. Calsporin® agit en produisant des enzymes et des métabolites qui favorisent la recolonisation de l’intestin par d’autres bactéries bénéfiques. Calsporin® est également présent dans Belly Bioactive Bites, Biotics et Boost – fournissant 250 000 000 UFC/g dans Belly et Biotics, et environ 166 670 872 UFC/g dans Boost – garantissant que les chiens recevant n’importe quelle combinaison de produits Bonza bénéficient d’un soutien probiotique constant, même pendant un traitement antibiotique. [Pour en savoir plus sur Calsporin®, consultez notre article sur les ingrédients].

Fractions de la paroi cellulaire de la levure : MOS et bêta-glucanes

Superfoods & Ancient Grains comprend des fractions de parois cellulaires de levure fournissant des mannan-oligosaccharides (MOS) et des bêta-glucanes, et la levure inactivée est un composant important de Belly Bioactive Bites and Biotics (9,38 % de la composition).

La MOS agit comme un site de liaison leurre pour les bactéries pathogènes telles que Salmonella et E. coli, réduisant leur capacité à coloniser la paroi intestinale – ce qui est particulièrement important lorsque l’interruption des antibiotiques a supprimé la barrière compétitive normale contre les pathogènes. Swanson et al. (2002) ont démontré chez le chien qu’une supplémentation en MOS influençait la fonction immunitaire et les populations microbiennes dans le gros intestin, notamment en augmentant le nombre de Lactobacillus et les concentrations iléales d’IgA. 18

Les bêta-glucanes, l’autre fraction bioactive majeure des parois cellulaires de levure, apportent un soutien immunitaire direct par l’intermédiaire de l’axe intestinal-immunitaire. Middelbos et al. (2007) ont réalisé une évaluation dose-réponse de la supplémentation en parois cellulaires de levure chez des chiens adultes et ont démontré que des niveaux d’inclusion plus élevés amélioraient les indices immunitaires, y compris l’augmentation des concentrations sériques d’IgA et la modification des profils des globules blancs, ce qui correspond à une meilleure préparation immunitaire. 19 En cas de dysbiose induite par les antibiotiques, lorsque les signaux microbiens normaux qui entraînent la fonction immunitaire sont diminués, cet effet immunomodulateur direct des bêta-glucanes devient particulièrement précieux, fournissant essentiellement un stimulus immunitaire alternatif pendant que le microbiome se reconstruit.

Réparation de la barrière intestinale : L-Glutamine et Zinc

La dysbiose induite par les antibiotiques ne se contente pas d’épuiser les bactéries bénéfiques, elle compromet également l’intégrité physique de la barrière intestinale. Une production réduite d’acides gras saturés, en particulier de butyrate, signifie moins de ressources pour les colonocytes qui forment la muqueuse intestinale, tandis que l’inflammation et la prolifération pathogène peuvent endommager davantage les jonctions serrées entre les cellules. Deux nutriments jouent un rôle particulièrement important dans la réparation de la barrière et sont inclus dans les formulations Bioactive Bites de Bonza.

La L-Glutamine est le principal carburant métabolique des entérocytes, les cellules épithéliales qui tapissent le tractus intestinal. Pendant les périodes de stress intestinal, y compris la dysbiose induite par les antibiotiques, la demande de glutamine des entérocytes augmente considérablement. La L-Glutamine soutient l’intégrité de la barrière intestinale en alimentant la prolifération et la réparation des entérocytes, en soutenant la production de mucine qui forme la couche protectrice de mucus et en maintenant l’expression de la protéine de jonction serrée entre les cellules. Pilla et Suchodolski (2020) ont noté dans leur étude exhaustive que les conséquences métaboliques de la dysbiose comprennent une altération de la fonction de la barrière intestinale et une diminution de la production d’acides gras saturés – les conditions mêmes dans lesquelles la supplémentation en glutamine est la plus pertinente. 2 La L-Glutamine est incluse à 16 250 mg/kg dans les Belly Bioactive Bites et Biotics, apportant un soutien ciblé au rétablissement de l’épithélium pendant et après les cures d’antibiotiques.

Le zinc est essentiel à l’intégrité des cellules épithéliales, à la cicatrisation et à la fonction immunitaire dans l’ensemble du tractus gastro-intestinal. La carence en zinc est associée à une augmentation de la perméabilité intestinale et à une altération de la réparation de la muqueuse, et il a été démontré qu’une supplémentation favorise l’intégrité des jonctions serrées et réduit l’inflammation intestinale. Bonza utilise le chélate de zinc de l’hydrate de glycine – une forme organique hautement biodisponible – dans les trois formules de Bioactive Bites : 3 750 mg/kg dans Belly et Biotics, et 2 638,9 mg/kg dans Boost. Les formes de zinc chélaté présentent une absorption supérieure à celle des sources de zinc inorganiques, ce qui garantit un apport efficace aux tissus qui en ont le plus besoin pendant la récupération intestinale. 20

Soutien botanique anti-inflammatoire et adaptogène

La dysbiose induite par les antibiotiques déclenche une cascade inflammatoire dans l’intestin. L’appauvrissement des bactéries bénéfiques, la perte d’AGCS anti-inflammatoires (en particulier le butyrate) et la prolifération d’espèces potentiellement pathogènes créent un environnement pro-inflammatoire. Les formules de Bonza comprennent une sélection ciblée de plantes anti -inflammatoires et adaptogènes – formant collectivement le mélange PhytoPlus® – pour traiter directement cette inflammation pendant que le microbiome se reconstruit.

Boswellia serrata (encens indien) est présent dans les trois compléments Bioactive Bites. Les acides boswelliques contenus dans le Boswellia inhibent la 5-lipoxygénase, une enzyme inflammatoire clé, apportant un soutien anti-inflammatoire sans les effets secondaires gastriques associés aux anti-inflammatoires non stéroïdiens conventionnels. Reichling et al. (2004) ont démontré que la résine de boswellia alimentaire produisait des améliorations cliniquement pertinentes chez les chiens souffrant de maladies inflammatoires des articulations et de la colonne vertébrale, confirmant la biodisponibilité et l’efficacité des acides boswelliques administrés par voie orale dans l’espèce canine. 21 Dans le contexte de la récupération des antibiotiques, cette activité anti-inflammatoire aide à gérer l’inflammation intestinale provoquée par la prolifération pathogène liée à la dysbiose.

Le curcuma (Curcuma longa), présent dans Belly, Biotics et Boost, fournit de la curcumine, un polyphénol aux propriétés anti-inflammatoires et antioxydantes largement documentées. La curcumine module le NF-κB et d’autres voies de signalisation inflammatoires liées à l’inflammation intestinale. Il est important de noter que Bioactive Bites Belly et Biotics contiennent également du poivre noir(Piper nigrum) à raison de 500 mg/kg, qui contient de la pipérine – dont il a été démontré qu’elle améliore la biodisponibilité de la curcumine jusqu’à 2 000 % grâce à l’inhibition de la glucuronidation dans l’intestin et le foie. 22[Voir notre article sur les ingrédients du curcuma pour obtenir toutes les preuves].

Le gingembre Legingembre (Zingiber officinale), présent dans les trois suppléments, est utilisé depuis longtemps dans la phytothérapie vétérinaire pour le soutien digestif. Les composés de gingérol et de shogaol du gingembre ont des effets anti-inflammatoires grâce à l’inhibition de la COX-2 et de la 5-LOX, tout en favorisant la motilité gastrique et en réduisant les nausées – des préoccupations courantes lors d’une antibiothérapie. Platel et Srinivasan (2004) ont démontré que le gingembre stimule l’activité des enzymes digestives et la sécrétion de bile, soutenant ainsi les processus digestifs compromis lorsque la dysbiose induite par les antibiotiques nuit à la conversion normale des acides biliaires. 23

La camomille(Matricaria recutita), présente dans les trois formules de Bioactive Bites, fournit de l’apigénine et du bisabolol – des composés aux propriétés anti-inflammatoires, antispasmodiques et apaisantes pour l’intestin. L’utilisation traditionnelle de la camomille en cas d’inconfort gastro-intestinal est étayée par sa capacité démontrée à réduire les spasmes des muscles lisses et à calmer l’inflammation des muqueuses, ce qui la rend particulièrement adaptée à l’inconfort digestif qui accompagne fréquemment les traitements antibiotiques.

Ces plantes agissent en synergie avec le soutien microbien fourni par le postbiotique HA-122 et le probiotique Calsporin®. Alors que les prébiotiques et les probiotiques se concentrent sur la reconstruction de l’écosystème microbien, le mélange botanique PhytoPlus® gère l’environnement inflammatoire – créant des conditions qui favorisent la recolonisation microbienne plutôt qu’une croissance pathogène continue.

Ingrédients fonctionnels supplémentaires favorisant la récupération

Plusieurs autres ingrédients contenus dans les préparations Bioactive Bites de Bonza contribuent au rétablissement général de l’organisme :

La spiruline (0,75 % dans Belly et Biotics) est une cyanobactérie riche en nutriments et en phycocyanine, un puissant antioxydant. Étant donné que Pilla et al. (2020) ont constaté une augmentation des marqueurs du stress oxydatif pendant le traitement au métronidazole, il est important de prendre en compte les antioxydants pendant la période de récupération des antibiotiques. 5

La farine de graines de citrouille (1 % dans les trois suppléments) fournit des fibres solubles et insolubles supplémentaires qui favorisent la fermentation microbienne, conformément à la découverte de Martini et al. (2025) selon laquelle les fibres alimentaires servent de substrats pour les bactéries productrices de SCFA restantes, même en cas d’interruption de l’administration d’antibiotiques. 12

La canneberge (1 % dans les trois suppléments) fournit des proanthocyanidines ayant des propriétés anti-adhésion contre les bactéries uropathogènes, offrant ainsi un soutien complémentaire à la gestion des agents pathogènes, en plus du MOS.

L’algue riche en DHA(Schizochytrium sp., 1 % dans les trois suppléments) fournit des acides gras oméga-3 aux propriétés anti-inflammatoires, favorisant la résolution de l’inflammation intestinale par une voie mécanique différente de celle des anti-inflammatoires botaniques. [Voir notre article consacré à l’ingrédient DHA-algue].

Note sur la gestion des antibiotiques

Cet article n’est pas anti-antibiotique. Les antibiotiques sont des médicaments essentiels qui sauvent des vies lorsqu’ils sont prescrits de manière appropriée. Les données vétérinaires plaident de plus en plus en faveur d’une utilisation judicieuse : réserver les antibiotiques aux cas où ils sont réellement nécessaires, plutôt que de les prescrire de manière empirique pour des affections qui peuvent se résoudre sans eux.

L’étude de Werner et al. (2020) sur l’amoxicilline-acide clavulanique n’a révélé aucun avantage clinique pour les diarrhées aiguës non compliquées, ce qui a conduit les auteurs à soutenir les lignes directrices internationales recommandant que les chiens souffrant de diarrhée ne reçoivent pas d’antibiotiques à moins qu’ils ne présentent des signes de septicémie. 11 De même, la revue de Pilla et Suchodolski (2020) note que les études n’ont trouvé aucune différence en termes de récupération clinique entre les chiens recevant du métronidazole et de la prednisone par rapport à la prednisone seule pour les entéropathies chroniques, et aucune différence en termes de mortalité ou de résultats lorsque les antibiotiques étaient comparés à un placebo chez les chiens non septiques souffrant de diarrhée hémorragique aiguë. 2

Ces résultats renforcent le message suivant : lorsque votre vétérinaire vous prescrit des antibiotiques, faites confiance à son jugement clinique, mais comprenez également que le fait de soutenir l’intestin de votre chien pendant et après le traitement est une mesure proactive que vous pouvez prendre en tant que propriétaire.

Comment soutenir l’intestin de votre chien pendant et après l’administration d’antibiotiques ?

L’approche Bonza : Un système d’alimentation et de supplémentation

Chez Bonza, nous avons conçu nos produits comme un système complémentaire, et non comme une solution à produit unique. Pour les chiens qui subissent une cure d’antibiotiques ou qui s’en remettent, l’approche fondée sur des données probantes associe :

La Fondation : Les super-aliments et les céréales anciennes – L’alimentation complète

Fournit un soutien prébiotique quotidien grâce à l’inuline de racine de chicorée, au probiotique sporulant Bacillus velezensis (Calsporin®), aux fractions de parois cellulaires de levure (MOS et bêta-glucanes) pour la fixation des agents pathogènes et le soutien immunitaire, et au mélange adaptogène PhytoPlus® pour la résilience de l’ensemble du corps.

Soutien ciblé : Bioactive Bites Biotics (Recommandation principale)

Fournit L. helveticus HA-122, postbiotique inactivé par la chaleur, soutenu par les preuves de Deschamps et al. (2025) pour réduire la surcroissance pathogène lors d’un défi antibiotique et accélérer le rétablissement du microbiome post-antibiotique. 13 Fournit également du Calsporin®(B. velezensis) à 250 000 000 CFU/g, de l’inuline de racine de chicorée (3,63 %), de la levure inactivée pour les MOS et les bêta-glucanes (9.38 %), de la L-glutamine (16 250 mg/kg) pour la réparation de la barrière intestinale, du chélate de zinc (3 750 mg/kg) pour l’intégrité épithéliale et le mélange botanique anti-inflammatoire PhytoPlus® comprenant du boswellia, du curcuma avec du poivre noir pour une meilleure biodisponibilité, du gingembre et de la camomille. Le traitement peut être commencé dès le premier jour de la cure d’antibiotiques et poursuivi pendant au moins quatre semaines.

Soutien supplémentaire si nécessaire

Belly Bioactive Bites – en cas d’inconfort digestif(selles molles, flatulences, diminution de l’appétit) pendant ou après le traitement antibiotique. Contient la même formulation de base de soutien intestinal que Biotics (HA-122, Calsporin®, inuline de racine de chicorée, paroi cellulaire de levure, L-glutamine, zinc, substances botaniques PhytoPlus®) avec des composés supplémentaires de soutien digestif, notamment l’ananas(Ananas comosus), qui fournit des enzymes naturelles de bromélaïne pour soutenir la digestion des protéines pendant les périodes où la fonction intestinale est compromise.

Boost Bioactive Bites – en cas de léthargie, de baisse de vitalité ou d’absence générale de vitalité lors d’un traitement antibiotique. Contient du HA-122 et du Calsporin® ainsi que des ingrédients qui soutiennent la vitalité, notamment la glucosamine, la chondroïtine, le MSM, l’acide hyaluronique, la L-carnitine, les algues riches en DHA, l’huile de graines de chanvre et le mélange adaptogène PhytoPlus® (comprenant l’ashwagandha, le ginseng sibérien et l’échinacée ainsi que le curcuma, le gingembre, le boswellia et la camomille). La formule PhytoPlus® de Boost, plus large, comprend des plantes adaptogènes qui soutiennent la réponse au stress de l’organisme pendant les exigences physiologiques de la récupération des antibiotiques, tandis que le chardon-marie(Silybum marianum) fournit un soutien hépatoprotecteur – pertinent étant donné que de nombreux antibiotiques sont métabolisés au niveau hépatique.

Questions fréquemment posées

Conclusion

La science est claire : les antibiotiques sauvent des vies, mais ils infligent aussi des dommages collatéraux importants au microbiome intestinal canin. Les recherches menées par les plus grands laboratoires vétérinaires de microbiologie ont montré que les antibiotiques couramment prescrits pour les chiens réduisent la diversité microbienne, épuisent les principales bactéries bénéfiques telles que C. hiranonis et Faecalibacterium, entravent la conversion des acides biliaires et la production d’acides gras saturés, favorisent la prolifération de pathogènes, et que la guérison est très individuelle et peut prendre des semaines, voire des mois.

La bonne nouvelle, c’est que le même corpus de recherche indique des stratégies claires et fondées sur des preuves pour soutenir l’intestin face à ce défi. Les prébiotiques, les postbiotiques, les probiotiques sporulés, les nutriments de la barrière intestinale et les plantes anti-inflammatoires peuvent être utilisés dès le premier jour d’un traitement antibiotique. L’étude de Deschamps et al. (2025) sur le postbiotique HA-122 fournit les preuves directes les plus solides d’une intervention nutritionnelle qui réduit activement la prolifération pathogène pendant le traitement antibiotique et accélère la guérison par la suite. 13

Les bouchées bioactives de Bonza – Biotics, Belly et Boost – sont toutes formulées pour offrir plusieurs niveaux de soutien intestinal – de la reconstitution microbienne grâce au postbiotique HA-122 et au probiotique Calsporin®, à la réparation de la barrière grâce à la L-glutamine et au zinc, en passant par la gestion de l’inflammation grâce au mélange botanique PhytoPlus® – reflétant la réalité multicible de la guérison due aux antibiotiques. Associé à la base quotidienne de Superfoods & Ancient Grains, ce système fournit un soutien nutritionnel complet, basé sur des preuves, à chaque étape du parcours antibiotique.

Chez Bonza, nous pensons que « Un intestin. Un chien entier » n’est pas seulement un slogan, c’est un principe scientifique. Le microbiome intestinal est le centre de commandement de la santé, et lorsque des antibiotiques sont nécessaires, donner à l’intestin de votre chien les outils nutritionnels pour se défendre, se rétablir et se reconstruire est l’une des choses les plus importantes que vous puissiez faire en tant que propriétaire responsable.

Ajoutez des années à leur vie et de la vie à leurs années.

Informations éditoriales

Dernière révision	Février 2026
Prochaine révision prévue Révisé par	Février 2027 Comité consultatif vétérinaire
Auteur	Glendon Lloyd | Dip. Nutrition canine (Dist.) | Dip. Dog Nutrigenomics (Dist.) | Fondateur, Bonza
Avis de non-responsabilité médicale	Cet article a été rédigé à des fins éducatives uniquement et ne constitue pas un avis médical vétérinaire. Consultez toujours votre vétérinaire avant de modifier le plan de traitement de votre chien, y compris l’ajout de suppléments pendant un traitement antibiotique.

Références

1. Suchodolski JS. Analyse du microbiome intestinal chez le chien et le chat. Vet Clin Pathol. 2022 ; 50 (Suppl. 1) : 6-17. doi : 10.1111/vcp.13031
2. Pilla R, Suchodolski JS. Le rôle du microbiome intestinal canin et du métabolome dans la santé et la maladie gastro-intestinale. Front Vet Sci. 2020 Jan 14;6:498. doi : 10.3389/fvets.2019.00498. PMID : 31993446 ; PMCID : PMC6971114.
3. Suchodolski JS. Microbiote intestinal des chiens et des chats : un monde plus vaste que nous ne le pensions. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2011 Mar;41(2):261-72. doi : 10.1016/j.cvsm.2010.12.006. PMID : 21486635 ; PMCID : PMC7132526.
4. AlShawaqfeh MK, Wajid B, Minamoto Y, Markel M, Lidbury JA, Steiner JM, Serpedin E, Suchodolski JS. A dysbiosis index to assess microbial changes in fecal samples of dogs with chronic inflammatory enteropathy. FEMS Microbiol Ecol. 2017 Nov 1;93(11). doi : 10.1093/femsec/fix136. PMID : 29040443.
5. Pilla R, Gaschen FP, Barr JW, Olson E, Honneffer J, Guard BC, Blake AB, Villanueva D, Khattab MR, AlShawaqfeh MK, Lidbury JA, Steiner JM, Suchodolski JS. Effects of metronidazole on the fecal microbiome and metabolome in healthy dogs. J Vet Intern Med. 2020 Sep;34(5):1853-1866. doi : 10.1111/jvim.15871. Epub 2020 Aug 28. PMID : 32856349 ; PMCID : PMC7517498.
6. Ziese AL, Suchodolski JS. Impact des modifications du microbiote gastro-intestinal dans les maladies digestives canines et félines. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2021 Jan;51(1):155-169. doi : 10.1016/j.cvsm.2020.09.004. Epub 2020 Oct 29. PMID : 33131916.
7. Stavroulaki EM, Suchodolski JS, Xenoulis PG. Effets des antimicrobiens sur le microbiote gastro-intestinal des chiens et des chats. Vet J. 2023 Jan;291:105929. doi : 10.1016/j.tvjl.2022.105929. Epub 2022 Nov 24. PMID : 36427604.
8. Suchodolski JS, Dowd SE, Westermarck E, Steiner JM, Wolcott RD, Spillmann T, Harmoinen JA. The effect of the macrolide antibiotic tylosin on microbial diversity in the canine small intestine as demonstrated by massive parallel 16S rRNA gene sequencing. BMC Microbiol. 2009 Oct 2;9:210. doi : 10.1186/1471-2180-9-210. PMID : 19799792 ; PMCID : PMC2759960.
9. Chaitman J, Ziese AL, Pilla R, Minamoto Y, Blake AB, Guard BC, Isaiah A, Lidbury JA, Steiner JM, Unterer S, Suchodolski JS. Fecal Microbial and Metabolic Profiles in Dogs With Acute Diarrhea Receiving either Fecal Microbiota Transplantation or Oral Metronidazole (Profils microbiens et métaboliques fécaux chez les chiens atteints de diarrhée aiguë recevant une transplantation de microbiote fécal ou du métronidazole par voie orale). Front Vet Sci. 2020 Apr 16;7:192. doi : 10.3389/fvets.2020.00192. PMID : 32363202 ; PMCID : PMC7182012.
10. Manchester AC, Webb CB, Blake AB, Sarwar F, Lidbury JA, Steiner JM, Suchodolski JS. Long-term impact of tylosin on fecal microbiota and fecal bile acids of healthy dogs. J Vet Intern Med. 2019 Nov;33(6):2605-2617. doi : 10.1111/jvim.15635. Epub 2019 Oct 31. PMID : 31674054 ; PMCID : PMC6872867.
11. Werner M, Suchodolski JS, Straubinger RK, Wolf G, Steiner JM, Lidbury JA, Neuerer F, Hartmann K, Unterer S. Effet de l’amoxicilline-acide clavulanique sur les résultats cliniques, le microbiome intestinal et les Escherichia coli résistants à l’amoxicilline chez les chiens atteints de diarrhée aiguë non compliquée. J Vet Intern Med. 2020 May;34(3):1166-1176. doi : 10.1111/jvim.15775. Epub 2020 Apr 23. PMID : 32324947 ; PMCID : PMC7255678.
12. Martini SE, Oba PM, Geary EL, Bauer LL, Dilger RN, Swanson KS. Caractéristiques de fermentation in vitro des fibres alimentaires à partir d’inoculums fécaux provenant de chiens nourris avec des aliments en conserve et traités au métronidazole. Front Vet Sci. 2025 ; 12 : 1670624. Publié le 29 octobre 2025. doi:10.3389/fvets.2025.1670624
13. Deschamps C, Humbert D, Brun M, Denis S, Durif C, Apper E, Blanquet-Diot S. Lactobacillus helveticus-derived postbiotic and live Saccharomyces boulardii restore gut microbiota after antibiotic disturbance in an in vitro canine gut model. Benef Microbes. 2025 Jul 24:1-21. doi : 10.1163/18762891-bja00088. Epub ahead of print. PMID : 40716759.
14. Gramenzi A, Clerico L, Belà B, Di Leonardo M, Fusaro I, Pignataro G. Profilage métabolique de compléments prébiotiques, probiotiques et synbiotiques dans un modèle de fermentation colique canine : une étude pilote de faisabilité révèle des effets distincts et complémentaires. Front Vet Sci. 2025 ; 12 : 1641809. Publié le 17 novembre 2025. doi : 10.3389/fvets.2025.1641809
15. Rawling M, Schiavone M, Mugnier A, et al. Modulation de la fonction de barrière muqueuse intestinale chez le poisson-zèbre (Danio rerio) nourri avec différents postbiotiques et un probiotique issu de Lactobacilli. Microorganisms. 2023 ; 11(12) : 2900. Publié le 30 novembre 2023. doi : 10.3390/microorganisms11122900
16. Ziese AL, Suchodolski JS, Hartmann K, Busch K, Anderson A, Sarwar F, Sindern N, Unterer S. Effect of probiotic treatment on the clinical course, intestinal microbiome, and toxigenic Clostridium perfringens in dogs with acute hemorrhagic diarrhea. PLoS One. 2018 Sep 27;13(9):e0204691. doi : 10.1371/journal.pone.0204691. Erratum dans : PLoS One. 2023 Jan 12;18(1):e0280539. doi : 10.1371/journal.pone.0280539. PMID : 30261077 ; PMCID : PMC6160196.
17. Taverniti V, Guglielmetti S. Health-Promoting Properties of Lactobacillus helveticus. Front Microbiol. 2012 Nov 19;3:392. doi : 10.3389/fmicb.2012.00392. PMID : 23181058 ; PMCID : PMC3500876.
18. Swanson KS, Grieshop CM, Flickinger EA, et al. Les fructo-oligosaccharides et les manno-oligosaccharides apportés sous forme de compléments alimentaires influencent la fonction immunitaire, la digestibilité des nutriments au niveau de l’iléon et de l’ensemble du tube digestif, les populations microbiennes ainsi que les concentrations de catabolites protéiques dans le gros intestin des chiens. J Nutr. 2002 ; 132(5) : 980-989. doi : 10.1093/jn/132.5.980
19. Middelbos IS, Godoy MR, Fastinger ND, Fahey GC Jr. A dose-response evaluation of spray-dried yeast cell wall supplementation of diets fed to adult dogs : effects on nutrient digestibility, immune indices, and fecal microbial populations. J Anim Sci. 2007 Nov;85(11):3022-32. doi : 10.2527/jas.2007-0079. Epub 2007 Jul 20. PMID : 17644789.
20. Wedekind KJ, Hortin AE, Baker DH. Méthodologie d’évaluation de la biodisponibilité du zinc : estimations de l’efficacité du zinc-méthionine, du sulfate de zinc et de l’oxyde de zinc. J Anim Sci. 1992 Jan;70(1):178-87. doi : 10.2527/1992.701178x. PMID : 1582905.
21. Reichling J, Schmökel H, Fitzi J, Bucher S, Saller R. Dietary support with Boswellia resin in canine inflammatory joint and spinal disease. Schweiz Arch Tierheilkd. 2004 Feb;146(2):71-9. doi : 10.1024/0036-7281.146.2.71. PMID : 14994484.
22. Shoba G, Joy D, Joseph T, Majeed M, Rajendran R, Srinivas PSSR. Influence de la pipérine sur la pharmacocinétique de la curcumine chez l’animal et chez des volontaires humains. Planta Med. 1998 ; 64(4) : 353-356. doi:10.1055/s-2006-957450
23. Platel K, Srinivasan K. Digestive stimulant action of spices : a myth or reality ? Indian J Med Res. 2004 May;119(5):167-79. PMID : 15218978.